STUDYING OF INACTIVATED VACCINE EFFICIENCY AGAINST NEWCASTLE DISEASE IN BROILER CHICKEN

Assiut University web-site: www.aun.edu.eg

STUDYING OF INACTIVATED VACCINE EFFICIENCY AGAINST NEWCASTLE DISEASE IN BROILER CHICKEN

NAWAL KHALED ALKARAWANI

Dept. Animal Diseases, Phd in Poultry Diseases, Faculty of Veterinary Medicine

University of Hama, Hama - SYRIA

Received: 31 December 2016;  Accepted: 16 January 2017

دراسة تأثير اللقاح الزيتي لمرض النيوکاسل على دجاج اللحم

نوال خالد القرواني

Email: nawalqarawany@gmail.com        Assiut University web-site: www.aun.edu.eg

تم اجراء دراسة ميدانية على قطيع دجاج اللحم في مدينة حماه لتقييم فعالية برامج التحصين ضد مرض النيوکاسل ، والتي يستخدم بها اللقاح الحي أو اللقاح الحي والميت (الخامل) ، حيث تم تقسيم القطيع الى مجموعتين الاولى تم تحصينها باللقاح الحي فقط والاخرى تمت مشارکة اللقاح الحي والميت( الخامل) معا بعمر 6 أيام لکلا المجموعين، واعادة التحصين  باللقاح الحي بعمر26 يوم من عمر القطيع،  اظهرت الدراسة فعالية المشارکة بين اللقاحين الحي والميت ( الخامل ) بشکل أفضل من اللقاح الحي لوحده ، کما أن اعادة اللقاح بعمر 26 يوم ادى الى تحسين مستوى الاستجابة المناعية وتشکيل حماية أفضل .

INTRODUCTION

المقدمــــــة

يعتبر مرض النيوکاسل من أکثر الامراض انتشاراً في جميع دول العالم التي تهتم بتربية الدواجن ، کما أنه يعد من أکثر المشکلات التي تواجه هذه الصناعة على المستوى العالمي والمحلي في الجمهورية العربية السورية ، وفي السنوات الخمس الاخيرة لوحظ تزايد حالات الجوائح الناتجة عن هذا المرض، و باعتباره من الامراض الحموية فان المعالجات لا تجدي نفعاً لذلک يعتمد على التحصين باستخدام اللقاحات الحية ، ولکن نتيجة تزايد حالات الجوائح فقد دعت الحاجة الى استخدام اللقاح الخامل معه لاعتبار ان اللقاح الخامل يرفع مستوى الاضداد في الدم حسب ملاحظة الباحثان (Allan et al., 1978  ;حبو 2004 ).

تعد حمة النيوکاسل والتي تنتمي الى جنس Rubulavirus (OIE, 2000; Alexander…) من عائلة الحمات نظيرة المخاطية هي العامل المسبب لمرض النيوکاسل عند الدواجن ، و تم عزلها لأول مرة عام 1926.

تقسم حمة النيوکاسل الى تسعة أنماط مصلية هيPMV1  الى PMV9 ، وتعتبر PMV1 هي أشد الانواع الملية امراضية وأخطرها على تربية الدواجن.

Corresponding author: Dr. NAWAL KHALED ALKARAWANI

E-mail address: nawalqarawany@gmail.com

Present address: Dept. Animal Diseases, Phd in Poultry Diseases, Faculty of Veterinary Medicine University of Hama, Hama – SYRIA.

لقد انتشرت العديد من الابحاث عن أنواع اللقاحات ضد مرض النيوکاسل ( Alexander…) ، حيث وجد أن عملية التحصين باللقاحات الحية والخاملة ضد المرض عادة ما تؤمن حماية جيدة للطيور من الخمج بالمرض، فقد نشرت أبحاث عديدة عن تفاصيل استخدام التحصين للسيطرة على المرض ( Meulemans…)، وابحاث عن طرق انتاج اللقاحات (Cross, 1988) ، وکيفية التحکم بالمرض عن طريق استخدام اللقاحات (Thorntorn, 1988) کما أدى أکتشاف المرض في الولايات المتحدة الى استخدام اللقاحات الخاملة في التحصين (Hofstad, 1953).

غالباً ما يتم التحصين باستخدام اللقاحات الحية ضعيفة الضراورة وذلک عن طريق مياه الشرب أو التقطير العيني أو الرش (Meulemans, 1988; Allan, 1978) ، أما اللقاحات الخاملة فتعطى بالعضل أو تحت الجلد ( OIE, 2000).

تعطي اللقاحات الحية مناعة موضعية متمثلة بالغلوبيولين المناعي AIg  ، اما اللقاحات الخاملة فتحدث مناعة دموية والتي تستمر لفترة أطول وبمعدلات عالية (Calnek et al.,1999; Gough et al.,1977).

أشار بين جين (Benne jean, 1988) أن مشارکة اللقاحات الخاملة مع اللقاحات الحية في التحصين ضد مرض النيوکاسل يعطي نتائج أفضل في الحماية فيما لو استخدم کل من اللقاحين وحده. کما أشار العالم رافايل وزملاؤه (Raphael et al., 1997) أنه عند تحصين الطيور بلقاح حي ولقاح خامل معاً وعند اجراء اختبار التحدي لها بعد 4 اسابيع من التحصين کانت نسبة معايير الاضداد عالية نسبياً وادت الى حماية تصل الى 100% من الاصابة.

أشار العالم ماس وزملاؤه (Maas et al., 1998) الى أن عترة حمة النيوکاسل کاللاسوتا يمکن أن تستعمل کأنتجين في أختبار منع التراص الدموي لقياس معايير الاضداد بعد التحصين ضد مرض النيوکاسل ، کما ذکر العالم کالنيک (Calnek et al., 1991) أنه عند قياس الاستجابة المناعية لمرض النيوکاسل عند الطيور باستخدام منع التراص الدموي نلاحظ أن التحصين بالذرية ضعيفة الضراوة لحمة النيوکاسل تعطي استجابة في الطيور القابلة للاصابة حوالي (2⁴ - 2⁶) لکن عند التحصين باللقاح الخامل يصبح معيار اختبار منع التراص عالياً اذ يصل الى (2¹¹) أو أکثر.

تهدف الدراسة الى تقييم فعالية اللقاح الزيتي الخامل عند مشارکته مع اللقاح الحي للتحصين ضد مرض النيوکاسل في دجاج اللحم.

MATERIALS AND METHODS

المواد والطرائق

أجريت التجربة على قطيع من صيصان اللحم (15000) طير ، وتمت التربية على نظام التربية الارضية ، کما تم تأمين مياه الشرب عن طريق مشارب الحلمات والعلف عن طريق المعالف الطولية اليدوية ، کما تمت التدفئة باستخدام مدافئ الفحم الحجري بهدف تأمين الحرارة اللازمة والمناسبة بحسب کل مرحلة من مراحل التربية.

قسمت الطيور الى مجموعتين ضمن نفس المدجنة الى حظيرتين متجاورتين ، حيث تم تحصين الطيور بعمر 6 أيام ، ففي المجموعة الاولى اعطيت الطيور اللقاح الحي المضعف فقط (clone30) عن طريق القطرة العينية ، أما المجموعة الثانية فقد أعطيت اللقاح الحي المضعف لنفس العترة وبنفس الطريقة لکن بمشارکة اللقاح الخامل حيث اعطي تحت جلد الرقبة بجرعة (0,2) مل. تمت اعادة اللقاح الحي المضعف لنفس العترة بعمر 26 يوم من عمر القطيع عن طريق ماء الشرب لکلا المجموعتين.

تم جمع عينات الدم من الطيور بعمر 6 أيام من الوريد الوداجي لقاس مستوى الاضداد الامية قبل التحصين ، کما جمعت عينات الدم من الطيور بعمر 22 يوم و 40 يوم من عمر القطيع من الوريد الجناحي. تم تثفيل العينات عند 2000 دورة / دقيقة لمدة 10 دقائق ، ومن ثم تم جمع المصل والاحتفاظ به في المجمدة (-22°c) لحين الفحص.

استخدم في اختبار منع التراص الدموي عترة اللاسوتا کأنتجين للفحص ، حيث تمت معايرتها باختبار التراص الدموي وتحديد الوحدة التراصية الثامنة (8HAU) ، کما تم اجراء اختبار منع التراص الدموي باستخدام اطباق ( 96 ) حفرة على شکل حرف (U)، کما استخدم في کلا الاختبارين محلول کريات دم بترکيز ( 0,5% ) محضر من دم أغنام جمعت من الوريد الوداجي لها وحفظت في انابيب بها مانع تخثر (سيترات الصوديوم) حسب توصيات مکتب الاوبئة الدولي OIE ومنظمة FAO (OIE,2000,FAO).

RESULTS

النتائــج

عند فحص الصيصان بعمر 6 أيام تبين عدم تجانس المناعات الامية حسب الجدول التالي:

وعند معايرة الاضداد بعمر 22 يوم من عمر القطيع کانت النتائج کالتالي:

المجموعة الاولى ( تم تحصينها  فقط باللقاح الحي ) :

المجموعة الثانية ( تم تحصينها باللقاح الحي والميت (الخامل) معاً ):

وعند العمر 40 يوم کانت النتائج کالتالي:

المجموعة الاولى ( تم تحصينها  فقط باللقاح الحي ) :

المجموعة الثانية ( تم تحصينها باللقاح الحي والميت (الخامل) معاً ):

DISCUSSION

المناقشة

لوحظ ارتفاع مستوى الاضداد بعد اعطاء اللقاح الخامل بـــ 15 يوماً وهذا يتفق مع (Rahman, 2002) ، کما استمر ارتفاع الاضداد حتى عمر 40 يوم ، وعند مقارنة مستوى الاضداد في عمر 22 يوم بين کلا المجموعتين لوحظ ارتفاعها في المجموعة الثانية والتي تم تحصينها بکلا اللقاحين الحي والخامل بشکل أکبر من المجموعة الاولى التي تم تحصينها باللقاح الحي لوحده ، کما أن اعطاء اللقاح الحي على عمر 26 يوم لکلا المجموعتين قد اسهم في رفع مستوى الاضداد في کلا المجموعتين، الا انها في المجموعة الثانية کانت الاستجابة المناعية افضل بسبب وجود اللقاح الخامل، وهذا يتوافق مع کل من

(DoIL et al., 1950; Hfstad, 1954; Winter field et al., 1957; Bran et al., 1959; Hoekstra, 1961; Carrnga et al., 1972; Yamano & Nakamura, 1974; Wyffels & Dheedene, 1979; Raphael et al., 1998; King, 1999; Rahman et al., 2002 and Hubbo, 2004(.

کما تبين من خلال الدراسة أنه يجب معرفة مستوى الاضداد الامية قبل عملية التحصين ، فاذا کان مستوى الاضداد مرتفعاً فيجب تأخير التحصين عن الاسبوع الاول حسب تجارب کل من

(Yamano& Nakamura, 1974;Rtshe&Shmetshl, 1962; Lndgraf, 1972; Awang et al., 1992; Saeed et al., 1988; Fadel, 1984; Gomez & Ramos, 1978; Rahman et al., 2002; Hubbo, 2004) وذلک خوفاً من معادلة الاضداد الامية عند التحصين الاولي.

REFERENCES

المراجــع

Alexander, D.J. (1997): Newcastle disease and other. Avian Paramyxoviridae infections.In Disease of poultry, pp 541-569. Edited by B.W. Calnek. Ames, Iowa: Mosby- Wolfe Iowa State University Press.

Allan, W.H.; Lancaster J.E. and Toth, B.(1978): ND vaccines, their production and use. F.A.O Rome 1978 163 pp; NO.10.

Awang, L.P.R.; Wan-Ahmad-Kusairy, W.S. and Abdu-Razak, J. (1992): Detection of Maternal antibody against Newcastle disease virus in chicks using an indirect Immunoperoxidase test. J. Vet. Malaysia, 4:19-23.

Benne Jeans, G. (1988): Newcastle disease: control policies. In.

Calnek, B.W.; John Barnes, H.; Beard, C.W.; Reid, W.M. and H.W. Yoder, Jr. (1991): Disease of poultry, 9^th ed. Iowa State University Press. Iowa, USA.

Cross, G.M. (1988): Newcastle disease vaccine production. In D.J. Alexander(ed), Newcastle disease, pp:333-346. Lower Academic Publ, Boston.

Crrange, E.; Eleftrescu, Balaci, and Popescu. (1972): Trials of B1 ND vaccine. I (single dose vaccination.II) primary and booster doses.Zootehnie Si Medicina Vet. 22(3) 67-79.

Doll, E.R.; McCollum, W.H. and Wallace, M.E. (1950a): Immunization against ND with a virus of low virulence. Vet. Med. 45, 231.

Gomez, M. and Ramos, P. (1978): Immune response in chicken vaccinated with NDV. Archivosde Med. Vet. 10 (1) 48-55.

Gough, R.E.; Allan, W.H. and Ndelciu, D. (1977): Immune response to monovalent and bivalent Newcastle disease and Infection Bronchitis inactivated vaccines. Avian Pathol. 6:131-142.

Hoekstra, J. (1961): Control of ND and IB by vaccination. Brit. Vet. J.117, 289.

Hofstad, M.S. (1953): Immunization of chickens against Newcastle disease by formalin inactivated vaccine. Am J. Vet Res 14:586-589.

Hubbo, K.R. (2004): Evaluation of vaccination efficiency in broiler chicken using inactivated vaccine against Newcastle disease. Master thesis. Albath University, Faculty of Veterinary Medicine, Syria.

King, D.J.A. (1999): Comparison of the onset of protection induced by Newcastle disease virus strain B1 and fowl poxvirus recombinant Newcastle disease vaccine to viscertropicvelogenic Newcastle disease virus challenge. Avian diseases 43 (4) 745-755 [En. es. 23 ref] U.S. Department of Agriculture.

Maas, R.; Oei, H.L.; Kemper, S.; Koch, G. and Visser, L. (1998): The use of homogous virus in the hemagglotination inhibition assay after vaccination with Newcastle disease virus strain LaSota or Clone leads to an over estimation of protective serum antibody titers. Avian Pathology 27 (6) 625-631.

Meulemans, G. (1988): Control by vaccination. In D.J. Alexander(ed), Newcastle disease, pp: 318-332. Lower Academic Publ, Boston.

Office International des Epizooties world organis animal health (2004): Manual of standard for diagnostic test and vaccines.

Raahman, F. (1998): Evaluation of immune response of tow Lentogenic Newcastle disease vaccines given through different routes in chickens. Indian Journal of Comparative Microbiology, Immunology and Infectious Disease 19 (1) 11-13.

Raphael Folitse, D.A. Halvorson, and V. Sivanandan (1998): Efficacy of Combined Killed In Oil Emulsion and Live Newcastle disease virus in chickens. Avian Diseases 42:173-178.

Saeed, Z.; Ahmad, S.; Rizvi, A.R. and Ajma, M. (1988): Role of maternal antibody in determination of an effective Newcastle disease vaccination program. Pak. J. Vet. Res, 1:18-21.

Thornton, D.H. (1988): Quality control of vaccines. In D.J. Alexander(ed), Newcastle disease, pp: 347-365. Lower Academic Publ, Boston.

Winterfield, R.W. and Seadal, E.H. (1957a): ND immunization studies.2. The immune response of chickens vaccinated with B1 NDV administered through the drinking water. Poultry Sci. 36, 103.

Wyffels, R.E. and Dheedene, J.D. (1979): ND in Moracco. Effect of the vaccination method on circulating antibodies and control of the clinical resistance to infection broilars. Vlaams Diergeneeskundig Tijdschrift 48(6) 506-511 Institut Hassan II.

Yamano, Y. and Nakamura, Y. (1974): Fluctuation in haemagglutination inhibiting antibody titer in chickes inoculated with TCND ND Vaccine Journal of the Japan Vet. Med.